Microplastiques dans le Homard d’Amérique (Homarus americanus) et dans des espèces de moules dans la zone côtière du sud-ouest du Nouveau-Brunswick, au Canada

Ce jeu de données comprend des données collectées par le Passamaquoddy Recognition Group Inc. (PRGI), une organisation autochtone à but non lucratif dirigée par la Nation Peskotomuhkati de Skutik. Ce projet est financé par le ministère Pêches et Océans Canada (MPO), Programme sur les données environnementales côtières de référence (PDECR). Les données incluront des échantillons collectés entre 2020 et 2027 et représentent des données d’échantillonnage sur le terrain ainsi que des données de laboratoire et de spectroscopie infrarouge à transformée de Fourier (FTIR) associées à l’échantillonnage du homard américain (Homarus americanus) et de la moule chevaline du Nord (Modiolus modiolus), dans le but d’étudier la présence et l’abondance de microplastiques et de microdébris chez ces espèces.

Échantillonnage : Des échantillons ont été prélevés dans la région du port de Saint John, dans la baie de Passamaquoddy et autour de l’île Grand Manan au Nouveau-Brunswick. Les échantillons ont été collectés à l'aide de pièges à homards standard, et le personnel technique du PRGI était présent lors des activités d'échantillonnage. Les homards conservés ont été transportés dans des espaces de laboratoire dans des glacières, puis immédiatement euthanasiés par congélation.

Analyse en laboratoire : Une fois les homards euthanasiés et disséqués, la digestion de la matière organique, et la filtration commencent. Les tubes digestifs et les tissus musculaires sont prélevés chez le homard, et les moules entières sont placées dans une solution de KOH à 10 %. Les échantillons sont ensuite transférés dans un four chauffé à 50 degrés Celsius pendant au moins 24 heures. Cette étape permet la digestion de la plupart de la matière organique. Les restes non digérés sont passés au tamis et analysés visuellement par des techniciens sous un microscope de dissection. Tout microplastique potentiel identifié à ce stade est isolé sur un papier filtre et déposé sur une lame de Petri. Le matériau restant est filtré à l'aide d'un filtre de taille de pores de 0.8 micromètre et d'une pompe à vide. Les filtres, tout comme les débris plus gros, sont également analysés visuellement sous un microscope de dissection. Tout microplastique potentiel est marqué et numéroté pour l'identification par FTIR. La dissection, la digestion et l'analyse visuelle sont effectuées dans un espace de laboratoire, en utilisant des hottes de sécurité biologique et des hottes de fumée pour minimiser la contamination par les microplastiques des échantillons, lorsque cela est possible. Tous les instruments utilisés sont rincés trois fois avec de l'eau filtrée (0.8 micromètre ou Milli-Q), et les échantillons sont couverts lorsqu'ils ne sont pas manipulés pour réduire les risques de contamination. Des blancs environnementaux, des blancs H2O et des blancs de KOH sont prélevés tout au long du processus pour garantir le contrôle de la qualité. À partir de 2022, le PRGI effectue des analyses en laboratoire dans un laboratoire propre dédié, réduisant ainsi l'exposition aux contaminants grâce à des procédures de nettoyage et à un code vestimentaire à faible teneur en plastique.

Une fois l'analyse visuelle terminée, les lames de Petri marquées et numérotées avec des microplastiques potentiels sont envoyées au laboratoire Western Surface Science de l’Université Western Ontario pour l’analyse FTIR. Cette analyse permet de déterminer la composition chimique des particules identifiées et d’indiquer si celles-ci sont constituées de plastique ou d’autres matériaux.